안녕하세요 이제 막 랩실에 들어와서 연구실 생활을 하고있는 학부생입니다!  DNA purification 후 얻은 dna로 전기영동을 진행하던 중 질문이 있어서 사진과 함께 질문 드립니다!   Q1. 주황색 박스 안에 있는 밴드는 왜 휘어져있는것인지 궁금합니다! 전기영동 진행 중 책상에 큰 충격은 없었습니다. Q2. 파란 작스 안에 있는 밴드들은 대체로 밑부분이 옴폭 들어가있는데 이같은 개형은 왜 발생되는지 궁금합니다. Q3. 자주색 박스와 초록색 박스안에 밴드가 끝부분에서 두개씩 있는걸 볼 수 있는데 자주색 박스의 반 갈라짐과 초록색 박스의 반 갈라짐이 조금 다른 모습을 보이는데 밴드가 끝부분에서 반으로 갈라지는 이유와 갈라지는 모양이 조금씩 다른 이유가 궁금합니다.   제가 이론이 조금 미숙하여 모르는 부분이 많습니다 알려주신다면 열심히 참고하여 공부하겠습니다, 감사합니다. 혹 전기영동과 관련된 추천 서적이 있다면 추천 부탁드립니다!

안녕하세요. DH5-alpha cell에 FLAG vector를 넣어 transformation 시킨 후, 배지에 키워 콜로니가 생겼고 거기서 약 5개정도의 colonly를 따서 각각 50ml tube에 10ml LB + Ampicillin을 넣고 overnight하였습니다. 이후 가장 잘 자란 놈만 골라서 glycerol stock을 만들고 그 놈을 다시 LB culture 하여 miniprep을 하였는데 DNA 농도가 50ng/ul밖에 되질 않네요... PLKO 등의 벡터를 예전에 뽑았을 땐 200ng/ul정도는 나와줬는데... 특정 Colony만 plasmid yield가 낮게 나올 수도 있는 걸까요 아니면 해당 벡터가 원래 수율이 낮은걸까요..?

다른 DNA는 잘들 뽑히는데 유독 갑각류에서만 DNA가 깨져서 스미어하게 나옵니다 ㅠㅠ.. 다른 sample들보다 PCR도 잘 안되고 NGS시에도 contig가 짧습니다. 혹시 DNA 추출에 내공이 있으신 분들은 어떻게 하시나요?   * 해양 갑각류에서 속살로 하면 기생충이 나오고, 껍질로 하면 뿌옇게 섞이지 않은 탄산칼슘(으로 추정되는)이 나오더라구요. 농도나 순도도 정확히 않은것같아 찝찝하고요..   뭐라도 좋으니 아무 조언이라도 부탁드립니다..   

gel extraction을 진행할때 UV에 비춰보면 제가 원하는 size에서의 band와 밑에 훨씬 더 두꺼운 band가 뜨는데요. 원하는 사이즈의 band를 자르는건가요? 밑에 로딩되어 내려온 두꺼운 사이즈의 band를 자르는 건가요?

안녕하세요, 우선 즐겁고 행복한 연말연시 보내시길 바랍니다. 다름이 아니라 lentivirus를 위한 package plasmid도 electrophoresis를 할 수 있는지 여쭤보고자 질문 드립니다! size만 알면 할 수 있는지요..? 미리 감사드립니다!

Avastin 분자량 : 149,196.82g/mol 몰수 (n) = 질량 (w) / 몰질량 (g/mol)인데요... 1mol에 149,196.82g 이 있다는 거잖아요? 그럼 제가 이걸 5mg/kg으로 투여를 하려고 하는데, 어떻게 계산을 해야하는지 궁금합니다.

몰수 구하는 공식을 공부하는 중에 궁금해서 여쭤봅니다. 분자량 = 몰질량 = 화학식량 = 원자랑이며, 몰수 (n) = w (질량) / M (몰질량) Avastin 몰질량 (=분자량) : 149,196.82 g/mol 식에 대입하면, Avastin 투여량 : 5mg/kg 이러한 정보로 Avastin 몰수 (n)을 구하는 방법을 알고 싶습니다.

안녕하세요, dna purification실험 관련해서 질문드립니다.      qiagen dna purification kit 사용해서 dna purification을 했습니다. (elution시 모든 샘플에서 동일하게 50ul of EB 사용했고요)   nanodrop을 사용해서 0.001 wt% dna solution의 concentration을 측정했습니다.  concentration측정시 base는 purification할때 사용한 elution buffer로 잡았고요,  purification전 dna concentration측정했을 때는 약 12ng/ul (1.67 260/280), purification 후 dna concentration은 약 21ng/ul(1.72 260/280)가 나왔습니다..;     이런 결과가 한 번이 아니라 여러 번 반복적으로 나왔는데요.. 위의 결과 외에도,    concentration of 0.01 wt% dna solution: purification 전: 102.7ng/ul (1.81 260/280), purification 후: 107.5ng.ul (1.90 260/280) 와 같은 결과가 나와서 당황스럽네요.    nanodrop이 고장났나(?) 싶어서 qubit으로도 재확인해보았는데요,    qubit으로 측정시 purification 후의 0.001 wt% dna concentration은 20ng/ul (1.81 260/280), 0.01 wt% dna concentration은 95ng/ul (1.90 260/280)으로, 각각 purification 전의 농도(12ng/ul (1.67 260/280), 102.7ng/ul (1.81 260/280))보다 여전히 높거나, 약간 낮은 수준입니다.   이전에 purification 실험을 진행했을 때는 purification전의 농도가 purified solution보다 제법 높았던 것 같은데..  혹시 실험과정에서 제가 어떤 실수를 한 건지, 혹은 다른 이유가 있는지..  알려주시면 정말 감사하겠습니다..!   두서없이 긴 질문글, 끝까지 읽어주셔서 감사합니다.       

실험을 좀 해보고싶은것들이 생겨서 시약좀 알아보는데  개인이 구매를 못하는 겁니까?

안녕하세요.. 초짜 연구원입니다.   DNA, RNA 추출해서 잘되었는지 확인하는과정으로 전기영동할때, 1개, 2개의 밴드가 나와야 잘된거다 라는 부분은 이해하였고 전기영동 시 DNA가 total DNA 느낌이라 1개 band RNA는 18S, 28S 해서 2개, 5S까지 해서 3개의 band가 보통 정상이다라는 부분은 이해하였으나   왜 DNA 추출되는 길이가 다르고 할텐데 1개의 밴드로 보이는지 18S, 28S RNA가 추출된 길이가 여러가지 일텐데 어떻게 딱 2개의 밴드로 보이는지 궁금합니다. 추출할때는 온전한 길이의 18S, 28S RNA가 많아서 각각 1개의 밴드를 형성하는 건지 어떻게 찾아보거나 이해해야하는지 궁금합니다.

cDNA을 추출해서 350ul을 확보 했는데요 농도를 쟤니까 37.8ug/ml이 나오더라구요 만들어야할 mixture의 농도는 1ug으로 RNA을 만들려고 하는데요 1ug = 1000ng  1000/37.8 = 26.45ul인데 mixture kit에서 total volume이 20ul 이거든요... kit에 있는 각각의 조성도 양이 적어서 어떻게 하는게 나을까요?....ㅠㅠ

안녕하십니까. 신참 대학원생입니다. 능숙하지 않다보니 실수가 많은것 같습니다. 때문에 간혹 DNA 농도가 낮거나 ratio가 엉망징창인 경우가 있어 Nano Drop 측량이 항상 무섭습니다... 우선 세가지 궁금한점이 있어요. - 점액질이 많아 lysis버퍼를 넣고 샘플이 뭉치는 경우에 어떻게 해야 할까요? 잘 풀리게 voltexing, tapping을 해도 될까요? 그 후에 RNase를 넣어도 될까요? - 프로토콜에는 없지만 마지막 단계에서 AE buffer를 넣기 전에 한번 건조하는 시간이 필요하지 않을까요? - 프로토콜 상에는 AE buffer 를 100ml 첨가하라고 되어있는데 50ml를 첨가해도 문제가 없을까요? 읽어 주셔서 감사합니다.

제가 실험 수업에서 아가로스 겔 전기영동 하고 EZ-Pure™ Plasmid Prep Kit. Ver. 2,  EZ-Pure™ Gel Extraction Kit. Ver. 2 가지고 실험 했는데 교수님이 그냥 다짜고쩌 실험 보여주고 다른 학생들에게 가려서 실험 과정은 보지도 못하고 생각없이 받아적기만 하고 실험했더니 결과도 잘 안나와서 근본적인 실험 목적과 제대로 실험 했을 때의 결과를 모르겠네요... 도와주시면 감사하겠습니다. 

안녕하세요. Real time PCR을 막 배우게 된 초보 연구원입니다. 다름이 아니라 housekeeping gene은 모든 세포에서 일정하게 발현되는 유전자로 알고 있는데요. 제가 실험에 사용한 gene이 actin-B이거든요. 근데 Ct 값이 28 부근에서 떠서요. 원래는 어느 Ct 값에서 뜨는게 정상인지에 대해 여쭤보고 싶습니다.

구강상피세포를 kit로 추출해 1.2% agarose gel에 135v 20분 Dna농도를 뒤로 갈수록 많아지도록 내렸습니다. 로딩샘플을 만들면서도 확인하고 겔에 넣기 전에도 다시 확인하면서 로딩했는데 3번이나 결과가 이상합니다. Ratio 값이 1.9인 것과 1.8인 차이에 의해서 일어날 수 있는 일인가요? 5번째보다 6번째 well에 더 많은 양의 gDNA를 넣었는데 왜 5번째가 더 밝게 보일까요…

TE buffer가 salt가 더 낮으면서 EDTA가 들어가는걸로 알고 있는데 둘의 큰 차이가 어떤건지 알수있을까요? protocol에서 elution 또는 1xTE 보퍼를 넣으라고 하셔서요