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 카테고리: 전체 > Laboratory Animals > Animal Handling
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Q. 실험동물기법에 대해
안녕하세요.이번에 처음으로 당뇨모델 마우스를 이용하여 실험을 계획하고 있습니다.그런데, 제가 처음 동물실험을 하는 것뿐만아니라가르쳐줄 선배가 없고 모두 혼자해야해서 사실 비싼 NOD mouse를 구입하여실험하기가 어렵게 느껴집니다.ㅠ그래서 값싼 ICR 마우스를 이용해서 STZ로 당뇨유발을 하고싶은대논문들을 읽다보면 STZ를 보통 복강주사로 투여를 많이하던대경구투여만 배우고 복강주사라던가 정맥주사 등 모르는게 많습니다.프로토콜만 보고 무작정 혼자 하기엔 한계가 있을거라 생각되어혹시. 이러한 동물실험기법을 따로 가르쳐줄 수 있는 회사가 있는지 궁금합니다;
쥐랫  |  2013.02.13
Q. 렛트에서 채혈하였습니다
렛트에서 심장채혈을 하였습니다. 근데 원심분리하여 혈청을 얻었는데요노랗게 잘 된것에 반해 용혈된것인지 분리해도 붉은색을 띠는데요무엇이 잘못되어서 그런건가요?채혈시 잘못 된건가요?아니면 원심분리시 잘못 된건지 궁금 합니다도와주세요
gg  |  2013.01.08
Q. 랫드 꼬리 채혈이요...
랫드에서 하루에 한번씩(매 회 500 ul) 21일간 반복 채혈을 해야 합니다.안와 채혈은 랫드에서는 한번도 해본적이 없어서, 미정맥 채혈을 하려고 하는데요.마우스는 꼬리에 혈관이 선명하게 잘 보이고 꼬리도 얇아서 잘 했는데,랫드는 한번도 해본적이 없었는데 오늘 해보니깐 꼬리가 두꺼워서어느정도 각으로 찔러야 되는지 감이 잘 안오더라구요.. 약 10주령의 SD rat을 사용합니다..랫드의 경우에는 아무래도 더 두꺼우니까 바늘 각도를 더 세워서 찔러야 하나요??꼬리 채혈 말고 반복채혈 할 수 있는 다른 방법 있으면 좀 가르쳐주세요!
회원작성글 ejkim  |  2012.11.14
Q. 혈액에서 serum 분리하려고 원심분리 할 때, 온도는 어떻게..
안녕하세요마우스 혈액에서  serum 분리를 하려고 합니다.상온에서 혈액을 완전히 응고시킨 후 원심분리 하는데요.원심분리 조건이 2,000 ~ 2,500 rpm 에서 10분 이라고 하던데온도는 어느정도로 해야 하죠?
회원작성글 ejkim  |  2012.11.14
Q. 검은 마우스, 미정맥 투여 요령이 있나요....ㅠㅠ
흰 마우스는 꼬리에 혈관이 선명하게 보여서 투여하기가 수월한데,검은 마우스는 꼬리도 검정이어서 혈관이 잘 보이질 않아서 너무 어렵네요;혈관좀 선명하게 보이게 하는 방법이 없을까요..?따뜻한 것으로 꼬리를 좀 감싸고 있으면 나아지나요..경험자분들 좀 도와주세요...
회원작성글 ejkim  |  2012.09.11
Q. corn oil 경구투여 관련하여 질문드립니다.
금속 존데와 플라스틱 syringe를 이용하여 마우스 경구투여하고 있는데,기존에 증류수에 천연물을 녹여 먹였을때는 loss가 크게 생기지 않았는데,이번실험에서는 corn oil에 물질을 녹여 경구투여하는데꽤 많은 양의 loss가 발생하고 있어요ㅜㅜ(30~40%정도일듯)경구투여 시료는 loss를 고려하여 10% 더 만들어 쓰고 있습니다.시료는 플라스틱 튜브에 만들고 있구요.혹시 corn oil 로 경구투여시 기존 증류수 경구투여와의 차이가 있는지,원래 이렇게 많이 loss가 발생하는지 궁금하네요ㅜ그리고 loss 줄이는 방법도 좀 하시면 부탁드려요~
회원작성글 shna89  |  2012.09.04
Q. isoflurane 구입방법
제약회사 연구소입니다. 이번에 동물실험 중 흡입마취제 (isoflurane)을 사용하여야하는데 구입방법을 잘 모르겠네요. 산타크루즈에는 수의사면허가 있는 사람에게만판매한다고 되어있던데,,(저희회사에는 수의사분이 없네요 ㅜㅜ)다들 어찌 구매하여 사용하시나요??
우르킹  |  2012.09.03
Q. 마우스 피하주사 관련 질문입니다!
마우스 피하주사를 하려고 하는데요..유투브에 올라와 있는 동영상을 보고 뒷 다리 부위에 투여 연습을 해 보았는데, 원래 주사를 한 부위가 부풀어 오르나요..?보통 피하주사는 목덜미 뒷쪽에 하라고 하던데, 목덜미에 해보니깐투여가 잘 된건지 안된건지 감을 모르겠어서요..그래서 뒷 다리에 피하주사 하는 영상이 있길래 그걸 보고 따라해보았는데,주사 부위가 부풀어 올라서... 바늘 빼니깐 피도 나구요..ㅠㅠ투여가 잘못 된건지 아니면 잘된건지를 모르겠어서요ㅠㅠ 원래 부풀어 오르며 피가 나는건가요?답변좀 해주세요~~!
회원작성글 ejkim  |  2012.08.08
Q. 마우스 복강주사 방법에 대해서 질문합니다.
마우스 복강주사를 해야 하는데요. 랫트에게는 복강주사를 할 때, 일단 20도 정도로 비스듬히 바늘을 찔러 외피를 뚫은 다음, 바늘을 다시 45도 정도로 세워서 내피를 뚫어 주사하는데요.마우스도 이와 같이 하면 되나요?아니면 마우스는 그냥 한방에 찌르나요...?경험자분들 답변 좀 부탁드릴께요.
회원작성글 ejkim  |  2012.08.02
Q. mouse labelling 방법중 toe 발가락을 사용할때는?
현재 실험용 mouse labelling에 대해 배우고 있습니다.알기로는 제일 많이 이용되는 방법에 ear punching 이 있다고 하는데 저는 발가락을 잘라서 labelling 하는 방법을 찾아볼려고 합니다.그런데 ear punching 은 책에서 찾을수 있는데 발가락은 않찾아지네요...각 실험실 마다 방법이 다르다고 답하신 내용들을 봤는데 혹시 발가락을 잘라서 labelling하는 실험실 분이 계신다면 가르켜 주시면 감사하겠습니다.
회원작성글 행운13  |  2012.07.18
Q. O2 consumption 측정 - mice
안녕하세요 여기서 항상 많은 도움을 받고 있습니다.다름이 아니라 mice에서 O2 consumption 을 측정하고 싶은데 제가 있는 곳은 장비가 없네요ㅠ.ㅠ혹시 이 장비를 사용하는 곳이 있나요?그리고 metabolic cage를  구매할려면 대략 얼마 정도 할까요?아시는 분 답변 부탁드립니다.실험에 많은 도움이 될껍니다.미리 감사드립니다.
아로아  |  2012.06.14
Q. 마우스 보정틀? 고정틀? 사용해서 tail-vein injection할 때 안움직이게 하는 방법이 있나요?
안녕하세요.. tail-vein injection 때문에 매일 고생하는...사람입니다ㅠ보정틀을 사용해서 꼬리만 밖으로 쭉 나오게 해서 주사를 하는데요. 다른 분들이 할 땐 움직이지 않고 얌전히 있더니 제가 하니까 막 몸부림을 치고 꼬리를 돌리고ㅠ마취안하고 해도 가만히 있는다해서 했다가 다섯마리나 죽였습니다..ㅠ 너무 괴롭네요ㅠ움직이지 말라고 꽉 잠궜더니 질식해서 죽어버리질 않나... 죄스럽고 미안하고 괴롭고 미치겠어요.. 어떻게 해야 하나요.. 잘 아시는 분들 답변 좀 부탁드립니다.
ㅠ_ㅠ  |  2012.05.07
Q. 마우스 복강주사를 해야되는데, 시약이 용매에 녹지않아요...ㅠㅠ
안녕하세요.급하게 동물실험을 해야하는데, 문제가 쫌 있어서 한참 찾아봐도 답도 안나오고, 주위에 물어볼데도 없고 해서 여기 글을 올립니다...acetaminophen 으로 간독성을 유발시킨 후, 천연물 소재의 샘플을 처리해야하는데, 처음 acetaminophen 을 녹이는것부터가 잘 안되네요...pbs에 녹일려고하는데, 이게 보통온도에서는 녹지를 않고, 워터배쓰나 히팅블락을 이용해서 60도 이상으로 온도를 올리고 몇십분 담궈놓으니까 녹기는 하는데, 이게 또 조금만있으면 온도가 낮아지면서 다시 안에서 가루가 생겨요...45mg/1ml  해서 10ml 만들었습니다. 완전 녹은상태에서 복강주사를 하더라도, 이게 체내로 들어가서 괜찮을지도 걱정되고...다른논문을 참고해도 보통 300mg/kg 정도로 투여를 했더라구요. 시그마알드리치 홈페이지에서 정보를 보니까,solubility  DMSO: soluble5 M ethanol: soluble50 mg/mL H2O: very slightly soluble라고 나오는데, 복강주사를 하려면 dmso나 에탄올에 녹이는건 안되지않나요?역시 온도를 높인 pbs에 녹여서, 결정이 생기기전에 주사하는방법이 최선일까요?여러분의 도움 좀 부탁드립니다 ㅠㅠ
회원작성글 멍멍멍  |  2012.04.26
Q. 질병걸린 생쥐의 혈청구하기!
안녕하세요^^west라고 합니다 ㅎ다름이 아니라 후배가 문의를 하는데 어디업체를 소개해야줘야할지..,,;;동물실험을 잘 안해본 후배라...잘알려주고싶어서요^^;음...마우스로 실험을해서 원래 혈청을 취한다음 실험을 해야는데..기간이 너무 걸려서 그러는데질병걸린 생쥐의 혈청을 필요로 해서 바로 얻을수있는 업체가 있는지 해서요......정상 혈청은 몇군데서 보긴했는데 질병걸린 생쥐의 혈청은........;;;;;;급한거같은데 답변 부탁드립니다^^
west  |  2012.04.06
Q. 마우스 간 보관방법 좀 가르쳐 주세요
안녕하세요 고수님들.......제가 동물 실험을 시작하게 되었습니다.그런데 처음부터 난관에 봉착을 하였네요...실험은 간을 분쇄해서 protein activity를 측정하는 것입니다.그런데 간을 꺼내고 한달 뒤쯤에 실험을 할것 같아요.그래서 homogenizate를 -70도씨에 보관하는것보다는 liver 자체를 보관하고 나중에 분쇄를 하는게 맞을것 같아서요....근데 liver를 어떻게 보관하면 좋을 지 모르겠습니다.그냥 튜브에 아무런 용액없이 간만 넣고 -70도씨에 넣어서 보관하면 되는지 아니면 어떠한 용액을 첨가해서 간에 손상이 가지않게 보관해야하는건지....모르겠네요...아시는 분들 제발...답변 부탁드립니다.
궁금해  |  2012.03.19
Q. Rat, tail vein blood collection
 안녕하세요.. 동물실험 중 어려운 점이 생겨 이렇게 질문을 올립니다..Rat에서 혈액을 2주마다 한번씩 채혈하여 생화학검사와 더불어 CBC 검사를 병행하려고 합니다.사실 CBC검사시 필요한 혈액은 극히 소량이라 걱정하지 않았는데..EDTA tube에 넣고 혈액을 mix해도 너무 소량이라 그런지 clot이 생겨 CBC용으로 사용할 수 없었습니다... 어떻게 하면 소량의 혈액으로도 CBC 검사를 가능하게 할 수 있을까요?그리고 채혈 방법은 Tail vein을 통해 collection 하고 있는데, 쉽지가 않습니다..Tail을 5분여간 따뜻한 물에 넣어 혈관이 팽창된 상태에서 채혈을 시도해 보았지만..생각보다 신통치 못하더라구요..다른 정맥 채혈 방법이나 tail vein에서 쉽게 채혈을 할 수있는 노하우가 있다면 알려주세요..감사합니다..
실험실곰  |  2012.02.17
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