쥐식이에 구성요소들이CaseinCorn oilCorn starchCelluloseMineral mixtureVitamin mixtureL-MethionineCholine bitartrate이들의 각각의 역할이 무엇인가요..??

유성매직으로 칠하면 이틀도 안돼서 표시가 희미해지던데잘 안지워지는 매직 없을까요?

안녕하세요. 제가 이렇게 글을 올리는 것은 다름이 아니라 쥐에게 약한 (학습이나 기억이 될만한) 전기 자극을 주려고 하는데, 신분이 고등학생이다 보니 어떻게 해야 하는지 방법을 잘 몰라서요ㅠㅠ 아 저희 조건반사에 대한 주제탐구를 해서 그런거니 악용으로 쓰는 것이 아닙니다.!!아 그리고 쥐(mouse)에게 어느정도 자극을 주면 되는 지도 알려주세요제발 부탁드려요

기도로 들어간 경우 폐를 부검하면 알 수 있다고 하는데,그 때에 폐가 어떤 모습을 하고 있는지 궁금합니다

마우스가 피를 토해냈는데요약물 때문은 아니고 P.O 중 실수인 것 같습니다식도가 손상을 입은 걸까요? 우선은 안정을 취하도록 두었는데

안녕하세요, 동물실험에 경험이 많지 않아 BRIC 회원님들의 조언을 구합니다.특정단백질의 overexpression transgenic mouse, hetero knockout mouse 두 라인을 유지하는 역할을 맡았습니다.TG는 C57BL/6J이고 hetero KO mouse는 C57BL/6N 인데요,라인유지를 위해 normal mouse를 구입해야하는데, 6J/6N 까지 맞춰주어야하는지 궁금합니다.TG 제작한 회사 연구원분께서, C57BL/6J와 /6N은 연구자에 따라 맞춰주기도하고, 그냥 구분없이 사용하기도 한다는데...경험 많으신 연구자분들의 조언을 구합니다.

투여를 하는데 (nude) 존대가 약 3cm?정도 들어가고 막히는 느낌이 났던 거 같습니다 그런데 약물이 아니라 우선 식용수로 막히는 느낌이 났음에도 연습투여 해봤을 때 켁켁거린다거나 질식하는 느낌이 난다거나 그런 게 없었던 거 같네요 뱉지도 않았구요 이런 경우 경구투여가 제대로 된 게 맞는건지 궁금합니다

누드마우스에게 PO를 하려고 하는데요존대가 기관에 들어갔는지 식도에 들어갔는지 어떻게 구분할 수 있나요?

랫드만 보정하다가 누드마우스 보정하려 하니까 잘 안되네요계속 목 부분에 주름이 접힌다 해야하나...팁 같은 거 있는지....

안녕하세요저희 실험실에서 요번에 천연물을 녹여서 mouse에 경구투여 하는 실험을 하려하는데천연물의 농도 때문에 질문을 드립니다..만약 1M의 천연물이 있다면 쥐의 체내에 얼마나(몇%정도) 흡수 되는지 알고싶습니다..물론 물질마다 다르겠지만 대략적인 값을 알고싶습니다..그리고 투여량은 10~20mL/kg을 많이 사용하시는데 맞는지도 알고싶습니다.감사합니다!

안녕하세요 천연물 유래 화합물을 TPA-induced skin inflmmation모델로 항염증 효과를 보려고 합니다. in vivo모델로 마우스를 이용할 계획이구요.등 피부에 화합물과 염증을 유도하는 TPA를 처리한후 skin tissue에서 protein을 얻어 염증관련인자를 확인하려 합니다.그런데 동물 실험시 등 피부에 화합물과 TPA를 처리할때, 쥐 고정이 힘들다보니 도포가 고르게 되지 않고 옆으로 새거나 하는 등의 문제가 생기던데요.. 등 피부에 도포해야 하기 때문에 배쪽이 보이는 일반 보정 방법은 쓸수가 없고,꼬리를 잡고 머리쪽을 고정해보려 했으나.. 그렇게 고정하기는 쉽지 않더라구요.혹시 등 피부에 샘플 도포하는 방법으로 실험 진행해보신 분 있으시다면좋은 방법을 알려주시면 감사드리겠습니다 ㅠㅠ또 하나, 샘플 도포 전에 마우스를 쉐이빙 해야 하는데,동물용 clipper를 이용하여 해보았더니 뭔가 깔끔하게 면도가 안되는 느낌이더라구요.그런데 제가 염증 모델이다보니 그 자체로 자극이 될 수 있는데 제모제를 쓰거나 하는건 실험에 영향을 줄거 같고,다른 논문들에서도 모두 surgical clipper를 이용했다고만 나와있는데 사진보면 굉장히 깔끔하게 면도가 되어 있는 모습이 보여서 그 또한 효과적인 방법이 있는지 궁금합니다.저희 연구실에서 처음 해보는 실험 모델이어서 조언 구할 곳이 마땅치 않네요.브릭 연구자님들 도움을 요청해봅니다! 감사합니다.  

제목 그대로 입니다.총 12마리 4개의 케이지에서 키우는데 피하에 암세포를 넣었거든요약을 넣어주는 시기가 다 달라서 각 케이지별로 쥐를 구분할수있으면 좋을 거 같은데방법이 있을까요?

우리 연구실에서 zebrafish embryo 독성실험 setup을 맡아 진해중인데 많은 어려움을 겪고 있습니다. 실험실상황을 말씀드리면 140825 일생의 zebrafish를 농진청에서 분양받아 mating해서 수정란을 받아서 관찰하고 있습니다. 아직 인큐베이터 한 곳에서만 진행되는 상황이라 미비한상태입니다.Normal development zebrafish embryo를 먼저 관찰하기 위해서 수정후 0.75시간 부터 관찰을 해야해서 실험실에서 직접 mating을 시키는데 수정 시기를 맞추는데 큰 어려움을 겪고 있습니다. matig cage를 구입해서 관찰전날 칸막이를 이용해서 암컷과 수컷을 따로 분리해놓고 관찰 당일날 아침에 칸막이를 제거하면 늦어도 2시간 후에는 수정란이 생긴다던데 암컷이 egg도 낳지 않습니다. 반면에 관찰전날에 그물을 설치한 cage에 암컷과 수컷을 넣고 다음날 아침에 확인하면 수정란이 있습니다. 하지만 이 수정란은 항상 보면 2세포기가 지나있어서 수정시기를 제가 참고문헌의 사진을 보고 예상하는 것일뿐 제대로된 관찰이 안됩니다. 그래서 수정되는 시기를 정확히 맞춰 관찰하고 싶은데 ... 너무 막막해서 질문을 남깁니다.혹시 좋은 방법이나 개선할 사항이 있으면 무엇이든지 말씀해주세요.감사합니다.

Rat을 운동시키는 동물 모델 관련 실험을 하고 있습니다.(뇌졸중이나 척수 손상은 아닙니다.)다른 비슷한 실험들에서도 Rat을 트레드밀에서 뛰게 해서 비슷한 모델들을 만들었다고 되어있고 해서 파일럿 실험을 해보는데, 뒤에 전기 자극이 있는데도 Rat이 잘 걷지 않고 심지어 전기 자극 있는 곳에 앉아 있습니다.수년전 어렴풋한 기억에 마우스는 잘 뛰는 것 같았는데요.뒤에서 쥐를 밀어주고 있습니다. 전기자극이 약해서일까요? 아니면 본래 그런 것일까요? 해결책 부탁드립니다.

카운팅(auto기능)되고 tare기능 있고, 수평계(물방울)가 부착되어있는 제품이면 좋겠습니다.

실험하다 손마디에 물렸는데 장갑껴서 괜찮다 생각하고 계속 진행했더니 끝나고 보니 피가 나있네요살짝 빨갛게 부은거 같기도 하고, 일단 알콜 소독했는데 이거 병원에 가야할까요혹시 마우스에 물려보신 분 계신가요

안녕하세요 Rat이나 mouse를 질병모델로 만들고 난 후에, 항생제를 먹이거나 i.v 로 주사하려고 합니다.케톨락주사는 제약회사로부터 구매하여야 해서 구하는 것 부터 어려움이 있어서 시그마에서 나오는 페니실린 파우더를 물에 타서 먹이려고 하는데 괜찮을까요?만약 i.v. 로 주사한다면 용량은 얼마나 해야 적당할 지도 알려주시면 감사하겠습니다..아니면, 동물수술 후 항생제 처리에 다른 좋은 방법 알고 있으신 선생님들의 답변 부탁드리겠습니다 !! ^^

이번에 ICR-mouse로 1형당뇨 유발모델 관련 실험을 진행중인 석사입니다.1형 당뇨 유발 처음해봐서 질문드립니다. 제가 논문을 찾아보고 이전에 mouse의경우에는 150mg, 200mg/kg 농도로 stz를 처리한다고 되어있어서 예비실험으로 100, 150, 200mg/kg 농도로 처리해보았을때 150, 200mg은 혈당치는 충분히 올라갔으나 다들 얼마못가서 반이상이 죽고 100mg은 초기에 유발은 안됬으나 1주일 뒤쯤 측정하였을때 250mg/dL이상 혈당치가 올라가서 이번에 100mg으로 실험을 진행하였으나 지금 유발이 되지않습니다. 제가 진행한방법은 ICR mouse : 8주령 (평균 몸무게 35g)Stz 투여량: 100mg/kg의 농도로 0.1M citrate buffer (pH4.5)에 녹여서 호일로 감싼뒤 빛을 차단하고 얼음에 박은채로 15~20분이내에 mouse들에게 IP injection 하였습니다. STZ 투여전에 google에 있는 hige dose stz induced protocol을 참조하여 4시간 공복후에 STZ를 100mg/kg으로 100ul씩 복강주사하였으며 그뒤 바로 식이를 주고 10% sucrose를 하루간 준뒤 다음날 일반 물로 갈아준뒤 48시간뒤에 12시간 공복 후 혈당량을 측정하였으나 당뇨유발이 되지않아서 2일더기다렸다가 12시간 공복뒤에 다시 측정하였지만 그대로입니다. STZ의 투여량 계산은 3.5mg/100ul로 투여하기위해서 10ml코니컬 튜브에 총 350mg의 STZ를 녹여서 볼텍싱하여 녹인뒤에 mouse들에게 주었습니다. 제가 잘못한 부분이 있는것인지, 아니면 100mg의 농도는 너무낮은 농도인것인지, 그렇다고 지난번에 똑같은방법으로 150mg,200mg으로 투여한 쥐들은 반이상이 죽어서 어떻게 해야할지를 모르겠습니다. STZ관련하여 지식이 많으신 분들 꼭좀 답변바랍니다...ㅠ mouse 몸무게 35g기준으로 100mg/kg일때 제가 injection한 농도가 맞는지도 여쭙고싶습니다..

안녕하세요, 저는 경구투여 동물실험으로 애를 먹고 있는 석사 4학기차 대학원생입니다.먼저 읽어주셔서 감사드립니다.ㅠㅠ동물실험의 고수님들께 경구투여 스트레스 줄이는 방법을 전수받고 싶어 질문을 올립니다.현재 제가 실험에 사용하고 있는 마우스 모델은 C57BL6/J male 6주령입니다. 마우스 크기가 작기 때문에 경구투여가 어려운 것 같습니다.ㅠㅠ사실 테크니션 분들이 경구투여를 해주시는데 무슨 이유에서인지경구투여 이틀 후부터 체중이 급감하더니 투여시작전 20g이었던 개체들이 12g, 16g 이 되었습니다. 등이 굽은 개체도 있구요.이런 경우에는 기도로 넘어가서 그럴 가능성이 높은지, 아니면 위를 건드려서 손상이 되어 그런건지 여쭙고 싶습니다.또한, 경구투여 스트레스를 줄이기 위해 카테터로 쓰이는 부드러운 플라스틱 튜브를 시린지에 연결하여 경구투여를 해볼까 하는데요.부드럽긴 한데, 튜브의 끝이 식도를 손상시키지 않을까 염려스럽습니다.이 튜브로 실험을 진행해보신 적이 있으시다면 답변 부탁드리겠습니다..ㅠㅠ또한 질문 이외에도 경구투여에서의 실수하기 쉬운 부분이나 투여스트레스를 줄일 수 있는 방법을 아신다면 조언 부탁드립니다.답변 기다리고 있겠습니다..ㅠㅠ감사합니다!!

 1주일가는 insulin제형개발중인데 당뇨쥐 식사는 어떻게 하시나요? 밥을 계속주시나요? 밥을 계속주면 너무 많이 먹는거 같은데 하루에 3번정도 정해진 시간에만 줄수있나요?