항생물질의 미생물학적 역가시험법에서 KP에서 Gentamicin Sulfate의 경우  표준품을 건조하여 사용하라고 되어있는데 표준품을 건조하지 않고 사용하는 이유는 뭔가요?     표준품의 경우 USP를 이용하고 있고 표준품 설명을 봤을때, 건조한 다음 671μg 으로 사용할 수 있다는 것으로 이해했습니다. 결과 구하는 수식에서는 따로 건조감량 값을 사용하지 않고 있습니다. 건조감량 등에 따른 보정을 하지 않고, 그냥 표준품을 사용해도 되는 건가요?  

cloning하는 중에 콜로니 dna prep후 enzyme double digestion해서  gel run했는데 위에 밴드는 무엇일까요? uncut? 2개 엔자임중에 한개가 아무래도 유효기간이 오래 된 것이라 working안한건지 .....아래밴드는 5kb정도에서 보이긴 하는데 이 gel 사진만으로 콜로니들이  pseudo colony라고 판단할 수 있나요?

주사제 무균시험 직접법시 사용 시약,기구 및 기기 와   멤브레인필터로 진행시 사용기기 시약, 기구, 스털라이저?가 필요하다고 들었는데 브랜드 몇개와 구매처 같이 세세하게 알려주시면 감사하겠습니다.

안녕하세요, 대학교에서 실험을 영양소 검출 실험을 진행 중에 탄수화물 검정에서 베네딕트 시약을 이용한 실험을 진행하였는데, 궁금한 점이 있어 질문 드립니다!  베네딕트 용액을 제조해서 사용할 때 시약1과 시약2를 나눠서 제작 후 반응을 할 때만 섞어서 사용하던데, 왜 시약을 한번에 제작하지 않고 나눠서 제작하는지 그 이유를 알 수 있을까요?  인터넷에 찾아봐도 잘 나오지 않아서 질문드립니다!!

이전에 G bead 에 1st antibody 를 붙여 pull-down assay 를 진행하여 target protein 과 GST fusion protein 이 binding 한다는 결과를 확인했습니다. 그런데 동일한 방법으로 GST pull-down 을 진행하자 GST fusion protein 은 잘 나오지만 target protein 의 binding 이 전혀 나타나지 않는 상황입니다. HEPES pH7.5 20mM, NaCl 150mM, NP-40 1% 로 두 실험 모두 동일한 buffer 를 사용하고 있는데, 도대체 어떤 문제 때문에 결과에 차이가 나타나는 걸까요?

클로닝 하기위해 벡터를 double digestion 한뒤 CIP처리하면 벡터만 self ligation된 콜로니가 절대 뜰수가 없나요? 콜로니가 7개만 떴고 DNA 프랩후 잘라보니 insert size0.7kb는안보이고 벡터인지 뮌지 알수없는 사이즈가 보여서요.모두 Pseudo인까요?

사실 이번 DNA/RNA 키트를 처음 사용하다보니 막히는 부분이 생기더라고요 그래서 여쭤보고자 합니다.   1. Incubate at room temperature (15~25℃) for 10 min의 의미가 실험실인 상온에서 10분을 둬야한다는 의미인건지 궁금합니다. 아니면 Incubate at RT for 1min이 상온에서 둬야하는 건지 알고 싶습니다. 

안녕하세요. 저는 실험에 대해 배워본 적 없는 일반 학생입니다. 이번에 elisa 실험을 처음으로 배우게 되었는데요 단위부터해서 희석까지 이해되는 것이 하나도 없습니다 ㅜㅜ 소 면역 글로불린 igg stadard 농도를 2000mg/dl로 보통 잡는다는데 맞는지 궁금합니다.   Recommend to dilute the serum or plasma samples with SampleDiluent(1:500)before test. The suggested 500-fold dilution can be achievedbyadding5μlsample to 95μl of Sample Diluent first, then complete the 500-folddilutionbyadding 10μl of this solution to 240μl of Sample Diluent. Therecommendeddilution factor is for reference only. The optimal dilution factor shouldbedetermined by users according to their particular experiments. ---> 어떻게 500배 희석이 되는건지 알려주세요 ㅜㅜ   Wash Buffer(1x)- If crystals have formed in the concentrate, warmuptoroom temperature and mix gently until the crystals havecompletelydissolved. Dilute 20 ml of Wash Buffer Concentrate (25 x) intodeionizedordistilled water to prepare 500 ml of Wash Buffer (1 x). --> wash buffer 20ml를 증류수에 희석하여 500ml로 만들려면 480ml 증류수를 넣어야 하는건가요? 그럼 24배 희석한거 아닌가요? 500ml증류수 넣으면 총 520ml가 되는데 그럼 25배 희석이 되는거니 500ml증류수를 wash buffer에 넣어야 하는건가요??     질문이 난해할 수도 있는데 제가 아무런 경험이 없어서 정말 모르겠습니다ㅠㅠ 도와주세요....

안녕하세요. 저는 현재 A549 세포에 LPS로 염증 반응을 유도하여 western blot 확인 중 입니다.   Inducer를 처리해도 유도가 안되는 문제는 많이 봤지만 non treat group과 LPS treat group의 밴드 둘 다 진하게 나오는 문제를 겪는 중입니다. LPS 처리조건을 정하기 위해 시간 (6, 24, 48) 및 농도 (1, 10, 20, 50, 100 ug/mL) 별 확인 해보았는데도 그룹 간 차이가 없습니다.   marker로는 MAPK, AKT, NF-kB를 주로 확인했는데 다른 cell line에서 잘나왔던 antibody이며, LPS는 sigma 055:B5로 구입한지 얼마되지 않았습니다.   조언 부탁드리겠습니다.

안녕하세요.  콩에서 단백질을 추출하여 western blot을 진행중인데  endo H를 사용하니 단백질이 너무 뭉개져서 target band가 너무 안나오는것 같아 lysis buffer를 사용하여 진행하려 시도중입니다.  우선 저희 실험방에선 endo H 외에 다른 buffer를 사용한 경험이 없어 타 실험방 lysis buffer를 사용하여 진행하였는데 잘 추출이 안되는 것 같아요. endo H를 사용했을때는 콩의 털 같은 찌꺼기(?)들이 많아보였지만 상층액 자체는 초록물이였는데 lysis buffer를 사용하니 상층액 자체가 되게 맑은 물같은 느낌이라서요ㅠㅠ 현재 사용중인 lysis buffer 조성은 50 mM Tris-HCl(pH 7.5), 150 mM NaCl, 1 mM EDTA, 0.1% Triton-X 100 입니다.  샘플을 액체질소로 얼린 후 갈고, 샘플 100 mg에 버퍼 200 ul 첨가하여 한번 더 갈아주었습니다.  해당 방법이 잘 안되는 것 같아 sonicator를 이용하였더니 그나마 조금 초록물이 나오긴 하지만 endo H 사용할때 만큼은 아닌것 같아서요...   혹시 콩으로 실험중인 분 계신다면 이에 대해 피드백좀 부탁드립니다ㅠ

안녕하세요. 다름이 아니라 대학 실험 과제 중 궁금한 부분이 생겨 질문드립니다. gene cloning의 과정 중에서 vector를 추출하고 난 후 insert와 ligation을 하고 transformation하는 과정을 진행 중인데요. 이때 ligation 과정에서 insert 대신 elution buffer를 넣어 control group으로 사용을 하는데 이때 왜 하필 elution buffer를 사용하는지 그 이유를 아시는 분이 있으실까요? 제가 검색을 못하는 것인지 이 것에 대해서는 검색해도 나오지가 않습니다 ㅜㅜ ligation을 할 때 mixture의 조성이 vector, insert(elution buffer), 5X buffer, ligase입니다.

안녕하세요. 석사 1학기 실험 초보입니다. 이번에 Ni-NTA column으로 protein purification을 진행하였습니다. lysis buffer(1L) - 300mM NaCl, 50mM Tris(pH 7.5), 10mM imidazole elution buffer(1L) - 300mM NaCl, 50mM Tris(pH 7.5), 250mM imidazole 로 기기 buffer 제조하여 진행하였는데 peak intensity가 매우 낮게 나왔습니다.   제가 생각하는 실패 원인은 1. sonication(Amp 70, 5분 진행, 총 7set)을 과다하게 하여 protein이 불활성화 되었을 것이다. (상층부가 투명해질 때까지 진행하다보니 평소 5회 정도 soni를 쳐주었는데 이번에 7회 진행하게 되었습니다. 다만, sample온도는 차갑게 계속 유지해주었습니다.) 2. 1달 정도 냉장보관된 colony를 plate에서 picking해서 사용했기에 건강하지 못한(?) cell의 단백질 생산 수율이 떨어졌고 이로 인해 purification 결과 peak가 낮게 나왔을 것이다. (정제 시 성공했을 때는 peak intensity가 2500 정도였는데, 이번에 250 정도 나왔습니다.) - (transformation 후 항생제 plate에서 colony 자란 것을 약 1달 전에 확인했고 재활용을 위해 plate를 랩에 싸서 냉장실에 1달 내내 두었던 것을 사용했습니다. ) 현재로써는 이 2가지인데 제가 아직 실험에 대한 이해도가 부족해서 어떤 부분을 수정해야할지 조언을 구하고 싶습니다. Ni-NTA purification을 한 번 더 진행할 수 있을 만큼 sample이 남아 있는 상태라 문제 확인을 위한 실험 진행해볼 수 있을 것 같습니다.  감사합니다.  

안녕하세요.   화장품 제조업에서 근무하는 사람입니다.   다름이 아니라 기능성화장품 기준 및 시험방법 내용 중   (나이아신아마이드 아데노신 액제) 정량법에서   기능성화장품을 가지고 나이아신아마이드로서 약 20mg 및 아데노신으로서 약 0.4mg에   해당하는 양을 정밀하게 달으라고나와있는데 해당하는 검체의 양을 어떻게 알 수 있는지   궁금합니다...   답변 부탁드려요 ㅠㅠㅠ

안녕하세요. cloning 진행하기 위해서 바이오닉스에서 plasmid DNA 를 주문하였습니다. 그런데 4 ug 의 양이 lyophilized DNA 형태로 왔는데 여기에 DW 로 dilution 시켜서 사용하면 되는 것이 맞나요? 이게 맞다면 DW 는 얼마나 넣어야 하는 건가요?

안녕하세요. 단백질 추출 실험을 위해 100% saturated ammonium sulfate를 만들었는데 아래에 결정이 생겨서요. 이럴 경우 다시 결정을 녹여야 하나요? 그리고 용해시켜야한다면 교반 시켜야하는건가요 아니면 온도를 높여서 용해시켜야하는건가요? 그것도 아니라면 상층액 부분을 그냥 사용해도 되는건가요?

NCIB_SNP 에서 변이타입 중 del 과 indel의 차이를 모르겠습니다.   CCR5-delta32의 염기서열을 찾는 과정에서  del을 체크하면 rs333이 안나오고, delins(insert+deletion의 합성어)을 체크하면 rs333이 검색됩니다. 제가 알기로 CCR5-delta32는 32bp만큼 결실된 것으로 del을 체크해도 검색이 되어야 하지 않나요..?  

NCBI에서 frequency로 나오는 아래 그림자료를 어떻게 해석할까요? 해당 염기만큼이 결실된 정도가 0.074라는 것 같은데, 전체 엑솜에서 0.074라는 것이고,  그아래부터, GnomAD, ExAC, PAGE_STUDY, KJPN, ALFA, GO-ESP 등등 에 대한 해석을 못하겠습니다ㅜㅜ   

GC-MS 분석을 위한 스탠다드를 구매하려고 하는데, 알고 있는 유명한 사이트는 모두 찾아보았는데, 경험이 부족해서인지 N-cyclohexyl-propanmide를 찾을 수가 없습니다. 구매할 수 있는 사이트나 좋은 방법을 알고 계시면 답변 부탁드립니다. 연구계획을 사유로 시간이 많지 않아 국내에서 구매할 수 있으면 더욱 좋습니다.

생명관련학과에 입학한 대학신입생 입니다. (실험)레포트나 논문의 Introduction, Reference에 기재할 수 있을 정도의 권위있고 공인화된 사이트 어디어디가 있을까요? 기본적인 생물, 화학적 개념들도 충분히 참고할 수 있을만한 곳을 원합니다. 위키피디아나 지식백과는 그렇게 공인되어 있지 않고, 그렇다고 엄청 간단한 개념들을 논문 하나하나에서 따오기에는 일일이 찾아야 하는거 같아서요..ㅜㅜ

cell 실험을 시작한지 얼마 안되어서 cell seeding하거나 culture할때 헷갈립니다...   예를들어 cell counting 하여 4.8 x 10^5 /ml (suspension 8ml)이 나왔다면 96well plate 2판에 well당 8 x 10^3 cells/well로 100μl씩 넉넉잡아 200well깔 예정일때, 8 x 10^3 cells/well 을 계산하기 쉽게 cells/ml로 변환하면---- (x 10) -----> 8 x 10^4 cell/ml  이고 필요한 volume은 200well x 100μl = 20000μl = 20ml [(8 x 10^4 cells/ml) / (4.8 x 10^5 cells/ml)] * 20ml = 3.333   media 16.67ml + 3.33μl 넣어 분주하면 되는게 맞나요? 틀리다면 말씀해주시면 감사하겠습니다