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Q. 몰수 계산 (초보) 제발 도와주세요
85% phosphoric acid 가 있는데 질량은 98g/mol입니다. 볼륨은 15ml있습니다 85%가 몇 M인지 알 수 있을까요? 어떻게 계산하는지 알려주실 수 있으나요?
회원작성글 yyyyyy  |  01.30
Q. 35% CaCl2 밀도 구하기 입니다..
0.1M 35% CaCl2의 몰농도를 구해야하는데요 ㅜ 몰수는 0.32mol, 용액의 l수를 구하고 몰농도를 구해야하는데 35% CaCl2의 밀도를 몰라서 중간과정에서 막히고 있습니다.....
회원작성글 으엥  |  01.30
Q. dilution refolding 테크닉
protein folding에서 dilution refolding 방법을 사용하려고 하는데요. 그 중에서도 pulsed dilution으로 20-fold refolding buffer에 denatured protein sample을 일정량 피펫으로 넣고, stirring 하면서 일정시간후에 다시 넣는 방법을 채택하고 있습니다. 그런데 protocol을 검색해 봐도 예시로 100ul 넣고 1min 기다리는 식으로 넣는다, 이런 식으로는 나와있지 않더라고요. 이미 졸업한 선배가 진행한 실험을 재진행하는 중이라 조언을 구할 선배가 없습니다ㅠ 1) denature protein sample을 refolding buffer에 넣는 양과 기다리는 시간은 어떻게 정하나요? 2) 피펫으로 protein sample을 넣을 때 팁을 refolding buffer 안에 넣은 후 조금씩 돌리면서 분사한다거나, 아니면 그냥 한번에 분사하거나, 위에서 방울방울 떨어뜨리거나 방법의 차이에 따라 유의미한 차이가 있을까요?
회원작성글 미틈틈  |  01.30
Q. 전기영동 사진 분석 첨부파일
안녕하세요 이제 막 랩실에 들어와서 연구실 생활을 하고있는 학부생입니다!  DNA purification 후 얻은 dna로 전기영동을 진행하던 중 질문이 있어서 사진과 함께 질문 드립니다!   Q1. 주황색 박스 안에 있는 밴드는 왜 휘어져있는것인지 궁금합니다! 전기영동 진행 중 책상에 큰 충격은 없었습니다. Q2. 파란 작스 안에 있는 밴드들은 대체로 밑부분이 옴폭 들어가있는데 이같은 개형은 왜 발생되는지 궁금합니다. Q3. 자주색 박스와 초록색 박스안에 밴드가 끝부분에서 두개씩 있는걸 볼 수 있는데 자주색 박스의 반 갈라짐과 초록색 박스의 반 갈라짐이 조금 다른 모습을 보이는데 밴드가 끝부분에서 반으로 갈라지는 이유와 갈라지는 모양이 조금씩 다른 이유가 궁금합니다.   제가 이론이 조금 미숙하여 모르는 부분이 많습니다 알려주신다면 열심히 참고하여 공부하겠습니다, 감사합니다. 혹 전기영동과 관련된 추천 서적이 있다면 추천 부탁드립니다!
회원작성글 생명사냥꾼  |  01.30
Q. FBS 제거하는 이유
CCD-986sk로 UV에 의한 노화 연구 계획중인데 UVB irradiation시 CCD-986sk 배지의 FBS를 제거하고 UV를 조사하는 이유가 뭔가요ㅠㅠ너무 기본적인거 물어보는거같아서 민망한데 찾아봐도 안나오고 어떻게 찾아봐야할지도 모르겠고 도와주새요,,,,ㅠㅠ
회원작성글 공철령  |  01.30
Q. TSA 2X배지
실험 진행을 하려고 하는 도중 TSA 2X 배지를 이용하라는 게 있더라고요.. TSA 0.8%, TSA 1.5% 제조법은 나와있는데 TSA 2X 배지는 아무것도 써있는 게 없어서 질문남깁니다 1. TSA 0.8%, 1.5% 제조에 쓰이는 Tryptic Soy Agar 와는 다른 성분으로 만드는 건가요? 2. 만약 같은 성분으로 만드는 거라면 100ml 기준으로 얼마나 베합해야 하나요? 급하게 물어봅니다 정말 급해요
회원작성글 yskpara  |  01.30
Q. 긴급!! mouse i.p injection 농도 문의
mouse 에 i.p 로 1mg/kg 주입하려 합니다. 대부분 마우스는 20g 이고 토탈 200ul i.p 하려는데 물질을 녹이는 것은 1% DMSO 입니다.  최대 몇 mg까지 녹일 수 있을까요? (더 녹일 수 있다면 10mg/kg 로 변경하려 합니다. ) 고수님들 도와주세용,,,
회원작성글 eheks753  |  01.30
Q. 식물 물관 안의 기포가 식물 생장에 미치는 영향(재밌는 질문)
페트병 벽면에 붙어있는 기포 방울들을 보고 이유를 찾아보면서 기온 차이에 따라 물 속에 용해되어 있던 산소가 배출되어 그렇다는 것을 알게 되었습니다. 물관을 가진 식물에 그 점을 적용하여 그러한 기포들이 생장에 어떤 영향을 미치는지 궁금해져 이 논문을 찾게 된 것인데요, 증산작용으로 인한 음압으로 실제 embolism이 발생하고 이를 해결하기 위한 다공성 구조가 존재한다는 것을 알 수 있었습니다. 이 부분은 초록 부분에서만도 알 수 있는 내용이었고 실질적인 논문의 주제는 이 embolism에 의한 계면현상을 제어하기 위한 방법을 유체역학적 관점에서 밝히고자 한 것인데 이에 대한 식물 내 시스템이 매우 복잡함을 알게 되었습니다. 그러나 이 논문에서는 증산작용으로 인한 embolism을 연구하고 있는 것이고 저는 온도 차이에 주목한 것이라 새로운 관점으로 접근해보고 싶은데 단순히 온도 차이를 다양하게 주면서 식물 생장을 비교하는 실험으로는 복잡한 매커니즘에 대한 기포의 영향을 이해하기 힘든 부분이 있을 것 같습니다. 혹시 어떻게 탐구를 진행해야할지 여쭤봐도 될까요?   P.S 식물의 구조와 메커니즘에 대해 구체적으로 공부하고 싶은데 관련 전문 서적 추천 부탁드립니다!
회원작성글 김규연  |  01.30
Q. cell stock 시점 질문
계대 후 cell stock을 하려고 하는데 어느정도 cell이 차야 stock하는게 좋나요? cell들은 다 붙었는데 아직 뜨문뜨문해보입니다. 지난번 계대에서는 꽉 채울 때까지 있다가 계대한건데 꽉 채워야 stock하기도 좋나요?  또 이번에는 penicilin을 첨가한 media로 배양하였는데 그럼 기준이 또 달라질까요? 답해주시는 선생님들 항상 감사합니다. 
회원작성글 앞구르기  |  01.30
Q. 물질혼합 농도 및 용량 계산 (초보)
안녕하세요. 제가 계산문제만 나오면 머리가 정지가 되서 정말 간절히 질문을 드립니다. 답변 달아주시면 참고하여 열심히 공부 하겠습니다. 질문 내용은 제가 마우스 6마리에 물질을 투여를 할 건데요. 마우스 한마리당 20g입니다. 물질은 500ul 씩 투여를 할건데, 투여 물질은 Mixture로써 농도를 VEGF-A 100ng/ml, 특정물질 33nmol/20g이 되게 투여를 하려고 합니다 (Working 농도) 6마리에 500ul씩 투여하려고 6*500ul (3ml)을 여유분으로 4ml로 total volume을 만들려고 하는데요. 현재 제가 가진 VEGF-A의 Stocking 농도는 (100ug/ml), 특정물질 (1mM)입니다. Mixture 4ml을 만들기 위해서 DW에 VEGF-A (100ug/ml), 특정물질 (1mM)을 얼마나씩 넣어야 VEGF-A 100ng/ml, 특정물질 33nmol이 되는지 꼭 좀 답변 해주시면 감사드리겠습니다. 농도희석 계산식은 Working 농도/Stocking 농도 x total volume하면 stocking 물질을 얼마나 넣어야 하는지로 알고 있는데요. 계산 적용이 잘 안될 정도로 기초가 없습니다... 꼭 좀 도와주시면 감사드리겠습니다...
회원작성글 medi92  |  01.30
Q. HPLC 단당류 분석
안녕하세요,   HPLC를 통해 당류(Glucose, Galactose, Mannose, Ribose, Xylose 등)를 분석하고자 합니다. HPX-87H 컬럼과 Hi-Plex Ca 컬럼을 각각 사용해보았으나 겹치는 피크가 있어 문제입니다. 조건을 다양하게 바꾸어보았으나 피크 분리가 잘 안됩니다.. 혹시 두 컬럼을 연결해서 사용해도 될까요? 아니면 C-18컬럼으로는 분리 분석이 안된다고 알고 있는데 혹시 같이 사용하면 괜찮을까요?
회원작성글 선사  |  01.30
Q. 특정 Colony만 plasmid yield가 낮게 나올 수도 있나요?
안녕하세요. DH5-alpha cell에 FLAG vector를 넣어 transformation 시킨 후, 배지에 키워 콜로니가 생겼고 거기서 약 5개정도의 colonly를 따서 각각 50ml tube에 10ml LB + Ampicillin을 넣고 overnight하였습니다. 이후 가장 잘 자란 놈만 골라서 glycerol stock을 만들고 그 놈을 다시 LB culture 하여 miniprep을 하였는데 DNA 농도가 50ng/ul밖에 되질 않네요... PLKO 등의 벡터를 예전에 뽑았을 땐 200ng/ul정도는 나와줬는데... 특정 Colony만 plasmid yield가 낮게 나올 수도 있는 걸까요 아니면 해당 벡터가 원래 수율이 낮은걸까요..?
회원작성글 대학원생1122  |  01.30
Q. 몰수 계산 (초보) 제발 도와주세요
85% phosphoric acid 가 있는데 질량은 98g/mol입니다. 볼륨은 15ml있습니다 85%가 몇 M인지 알 수 있을까요?
회원작성글 yyyyyy  |  01.30
Q. 계대배양
오버나잇한 컬쳐를 50ml에 od=1.8당 1ml 희석하라고 하셨는데 od값이 1.6 나왔습니다 그럼 0.8ml 접종을 하면 되는게 맞는지.. 여쭤봅니다. 오디값이 더 낮게 나왔으니 더 많이 접종해야 할 것 같은데 계산을 잘 못하겠네요 ㅜ 실험이제 처음 시작한학부생입니다 ㅜ
회원작성글 바바12  |  01.30
Q. TLC관련 문의!! 부탁드려요
두 곰팡이를 co-culture 한 배양액중에 tannic acid가 생성되었는지 확인하기 위한 목적으로 TLC실험을 진행하였습니다. 우선 tannic acid의 분자량은 1,701.19g/mol입니다. 아세톤으로 추출을 진행하였으며 농축한뒤 첫번째 이동상(CH3 Cl: ethyl acetate: formic acid=5:4:1)으로 tlc를 내려보았더니 거의 전개가 되지 않은것을 볼수있었다.그래서 이동상을 바꾸어 보았다.                             두번째 이동상은 에틸 아세테이트: 포름산: 아세톤: DW= 100: 11: 11: 27를 이용하였으며 그 결과 이전보다는 전개가 되었지만 실리카겔의 위쪽까지 전개되지는 않았다. 맨 왼쪽은 dw에 희석한 standard tannic acid이고 맨 오른쪽은 acetone에 희석한 tannic acid 이다. 질문사항은 1. 두개의 standard 중 어떤 용매에 희석한 standard가 더 적합한지?  2.sample이 전개되지 않은 이유가 이동상이 적합하지 않아서 인지, 분자량이 커서 인지 아니면 제가 따로 정제 과정을 거치지 않았기 때문인지 궁금합니다. 3.스탠다드와 샘플이 다른 속도로 전개된 이유에 대해서도 궁금합니다 4. 스탠다드의 농도 설정을 어떻게 해야될지  궁금합니다.
회원작성글 김소현이다  |  01.30
Q. Mixture를 만들때 농도에 따른 용량
안녕하세요. 농도에 따른 물질 혼합물을 만들려고 하는데요. 각 물질을 혼합하면 농도가 달라질거 같아서 계산을 하려는데 이해가 잘 안가서 질문을 드리게되었습니다. 혼합하려는 물질 stock 농도가  VEGF-A (100ug/ml) 특정 물질 (80nmol 동결건조 상태 -> PBS 80ul를 추가하여 80nmol/80ul로 만들어서 1mM) 제가 Mixture를 4ml 만들기 위해 VEGF-A와 특정물질을 특정 농도가 되게 만들려고하는데요. 4ml을 만들기 위해 DW에 VEGF-A는 100ng/ml농도가 되게, 특정물질은 33nmol이 되게 DW에 혼합을 할건데 각각 얼마나 넣어야 하는지 계산을 잘 못해서 질문을 드립니다... 꼭 좀 도와주시면 감사드리겠습니다. 
회원작성글 medi92  |  01.30
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