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 전체 > Molecular Biology-DNA > Gene Cloning
조회 4923  스크랩 인쇄하기 주소복사 트위터 공유 페이스북 공유 
질문 cloning이 잘 안됩니다
cloning 무지  | 2015.06.18 19:39
답변있는 질문은 수정/삭제 불가(☞문의)
안녕하세요
저는 현재 cloning에서 몇 개월째 헤매고 있는 사람입니다.


저는 지금 pETDuet-1에 약 1.5kb gene이 들어가 있는 plasmid에 약 2kb가량의 gene을
cloning하려고 합니다.
저의 cloning은 이렇습니다.

- primer 설계시 제한효소 앞 염기 4개를 추가하여 제한효소처리의 효율 증가
- Taq polymerase 사용 (promega)
- 제한효소 처리 (insert는 20h, plasmid는 1h → insert는 제한효소가 20h 이상처리할때 90%의 효율이 나오기 때문에 이렇게 하고 plasmid는 1h 이상 처리하면 밴드가 나오지 않더라구요)
- 제한효소처리 후 DNA purification으로 gel loading 후 DNA conc. 재기
- 약 1:3의 비율로(insert 3) ligation (pormega) room temp. O/N
- DH5alpha com.cell (hit com cell)로 transformation

이렇게 했는데 콜로니가 전혀 뜨지 않습니다
항생제는 amp.을 사용하고 있고 플레이트에 항생제 농도를 낮추어 spreading을 해보았지만 뜨지 않습니다.
각 단계를 확인하기위해 4가지의 조건으로 또 나누어 실험을 해보았는데
- 원래의 plasmid transformation
- 원래의 plasmid HindⅢ로만 제한효소처리 후 transformation
- 원래의 plasmid NcoⅠ으로만 제한효소처리 후 transformation
- 원래의 plasmid HindⅢ, NcoⅠ로 처리, insert도 동일하게 처리후 ligation까지 하고 transformation
이렇게 한 결과 제일 처음의 경우에서만 colony가 생성되었습니다 그것도 아주 많이요..
어찌해야 할까요 저는...ㅠㅠ
#cloning
 
#R.E.T
 
#10KB
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답변 본 정보는 네티즌에 의해 작성된 정보로, 내용 중 중요하다고 생각되는 부분은 추가적인 사실 확인을 반드시 하시길 바랍니다.
대왕개구리엘피스  |  2015.06.19   
Plasmid DNA를 1시간 이상 처리할 때 DNA가 없어져 버리는 점이 마음에 걸립니다.
제한효소의 문제거나 또는 plasmid DNA의 정제도 문제로 생각되는데, 뭐가 원인이 되었건 이런 경우라면 어떤 수를 쓰더라도 cloning은 성공하기 어렵습니다. 

insert DNA는 20시간을 처리해도 문제가 없다고 하니 아마도 plasmid DNA에 exo/endo 오염이 있거나 또는 salt등 다른 오염이 있어 제한효소가 제대로 작동하지 않았나 하는 추측을 해봅니다.

"colony수가 아주 많다."
조금은 주관적인 표현인 듯 합니다.
Cloning에서 가장 중요한 요인중 하나가 competent cell의 효율입니다.
가능한 10^7 /ug DNA 이상의 효율을 갖는 competent cell을 사용하는 것이 좋으며 이를 정확히 하지 않으면 10^5 짜리나 10^7 짜리나 intact plasmid를 넣으며 많이 뜨기는 매한가지가 됩니다.
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